(19) 대한민국특허청(KR)
(12) 등록특허공보(B1)
(45) 공고일자 2016년11월21일
(11) 등록번호 10-1677948
(24) 등록일자 2016년11월15일
(51) 국제특허분류(Int. Cl.)
C12Q 1/68 (2006.01)
(52) CPC특허분류
C12Q 1/689 (2013.01)
C12Q 2525/107 (2013.01)
(21) 출원번호 10-2016-0046420(분할)
(22) 출원일자 2016년04월15일
심사청구일자 2016년04월15일
(62) 원출원 특허 10-2015-0176870
원출원일자 2015년12월11일
심사청구일자 2015년12월11일
(56) 선행기술조사문헌
KR101531296 B1*
US08889358 B2*
US20070059693 A1*
서열번호 5, 9의 서열검색 결과(GeneBank
accession number KF826094, KP729644,
KP729643, 2015.09)*
*는 심사관에 의하여 인용된 문헌
(73) 특허권자
대한민국
(72) 발명자
김명석
부산광역시 기장군 기장읍 기장해안로 216
정승희
부산광역시 기장군 기장읍 기장해안로 216
(뒷면에 계속)
(74) 대리인
이처영, 장제환
전체 청구항 수 : 총 5 항 심사관 : 이재영
(54) 발명의 명칭 연쇄구균 감염증 원인세균인 스트렙토코카스 이니애의 판별 및 검출용 유전자 마커, 및 이를
이용한 원인세균의 판별 및 검출 방법
(57) 요 약
본 발명은 어류 연쇄구균 감염증 원인세균의 판별 및 검출용 유전자 마커, 및 이를 이용한 원인세균의 판별 및
검출 방법에 관한 것으로, 더욱 자세하게는 어류 연쇄구균 감염증 원인세균인 스트렙토코카스 이니애
(Streptococcus iniae)의 16S rDNA 유전자를 코딩하는 DNA 염기서열 중 세균 특이적 단일염기다형성(Single
(뒷면에 계속)
대 표 도 - 도13
등록특허 10-1677948
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nucleotide polymorphism, SNP)을 포함하는 유전자 마커를 선정하여 증폭시킨 다음, 증폭산물을 특이적으로 인식
하는 펩티드핵산(Peptide Nucleic Acid, PNA)을 혼성화시키고, 혼성화된 산물의 온도 조절을 통해 온도별 융해곡
선을 얻고, 상기 얻은 융해곡선의 분석을 통해 융해온도로부터 세균 종을 판별하거나 어류의 상기 세균 종의 감
염 여부를 검출하는 방법에 관한 것이다.
본 발명은 어류 질병 원인세균인 스트렙토코카스 이니애(Streptococcus iniae)의 판별 및/또는 검출용 유전자 마
커를 선정하고, 상기 유전자 마커에 특이적인 펩티드핵산 및 프라이머 쌍을 이용하여 세균 종마다 서로 다른 형
광의 증폭 및 융해곡선을 나타내게 함으로써 어류 질병 원인세균을 간단ㆍ신속ㆍ정확하게 판별하고, 어류의 상기
세균의 감염 여부를 검출할 수 있는 효과가 있다.
(52) CPC특허분류
C12Q 2600/156 (2013.01)
(72) 발명자
최혜승
경상남도 창원시 진해구 여명로25번길 55
한현자
부산광역시 기장군 기장읍 기장해안로 216
도정완
부산광역시 기장군 기장읍 기장해안로 216
김진도
전라남도 여수시 화양면 세포당머리길 22
등록특허 10-1677948
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명 세 서
청구범위
청구항 1
삭제
청구항 2
삭제
청구항 3
서열번호 5의 염기서열로 표시되는 스트렙토코카스 이니애(Streptococcus iniae)의 판별 또는 검출용 PNA 프로
브.
청구항 4
제3항에 있어서, 리포터 및 소광자 중에서 어느 하나 이상이 결합되어 있는 것을 특징으로 하는 PNA 프로브.
청구항 5
서열번호 1 및 서열번호 3의 염기서열로 표시되는 프라이머 쌍, 및 제3항의 PNA 프로브를 포함하는 스트렙토코
카스 이니애(Streptococcus iniae)의 판별 또는 검출용 조성물.
청구항 6
서열번호 1 및 서열번호 3의 염기서열로 표시되는 프라이머 쌍, 및 제3항의 PNA 프로브를 포함하는 스트렙토코
카스 이니애(Streptococcus iniae)의 판별 또는 검출용 키트.
청구항 7
다음 단계를 포함하는 스트렙토코카스 이니애(Streptococcus iniae)의 검출 또는 판별 방법:
(a) 검체 시료로부터 표적 핵산을 추출하는 단계;
(b) 상기 표적 핵산에 포함된 스트렙토코카스 이니애(Streptococcus iniae)의 유전자 마커 염기서열을 서열번호
1 및 서열번호 3의 염기서열로 표시되는 프라이머 쌍을 이용하여 증폭시키고, 상기 증폭된 유전자 마커 염기서
열에 제3항의 PNA 프로브를 혼성화시키는 단계;
(c) 상기 (b) 단계에서 PNA 프로브로 혼성화된 산물의 온도를 높이면서 온도별 융해곡선을 얻는 단계; 및
(d) 상기 (c) 단계에서 얻은 융해곡선의 분석을 통해 융해온도로부터 스트렙토코카스 이니애(Streptococcus
iniae)를 검출 또는 어류에 상기 세균 종의 감염 여부를 판별하는 단계.
발명의 설명
기 술 분 야
본 발명은 어류 연쇄구균 감염증 원인세균의 판별 및 검출용 유전자 마커, 및 이를 이용한 원인세균의 판별 및[0001]
검출 방법에 관한 것으로, 더욱 자세하게는 어류 연쇄구균 감염증 원인세균인 스트렙토코카스 이니애
(Streptococcus iniae)의 16S rDNA 유전자를 코딩하는 DNA 염기서열 중 세균 특이적 단일염기다형성(Single
등록특허 10-1677948
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nucleotide polymorphism, SNP)을 포함하는 유전자 마커를 선정하여 증폭시킨 다음, 증폭산물을 특이적으로 인
식하는 펩티드핵산(Peptide Nucleic Acid, PNA)을 혼성화시키고, 혼성화된 산물의 온도 조절을 통해 온도별 융
해곡선을 얻고, 상기 얻은 융해곡선의 분석을 통해 융해온도로부터 세균 종을 판별하거나 어류의 상기 세균 종
의 감염 여부를 검출하는 방법에 관한 것이다.
배 경 기 술
세균의 유전자를 분석하기 위한 다양한 방법이 개발되어 있으며, 유전자 염기서열 분석법(sanger sequencing),[0002]
RAPD(random amplified polymorphic DNA), RFLP(restriction fragment length polymorphism)법 등이 사용되고
있으나, 여전히 분석 시간이 길고 절차가 까다롭다는 문제점을 가지고 있다.
양식 현장에서 사용되고 있는 세균성 질병의 검출은 많은 시간을 필요로 하는 세균 배양법에 의존하고 있으며[0003]
이러한 세균 배양법은 객관성이 떨어져 검출 오류의 가능성이 있고, 선택배지를 사용한 세균 배양법은 단일 세
균에 대한 검사만 가능하며, 세부적인 분류가 불가능한 단점을 가지고 있다. 검출의 정확도를 높이기 위하여 생
화학 분석(API test)가 사용되고 있으나, 절차가 복잡하고 반응시간이 길어 신속한 검출이 불가능하며, 특히 수
산 질병관련 세균의 경우, 데이터베이스가 많지 않아 정확도가 낮으므로 실제 수산 현장에 사용되지 않고 있다.
이러한 문제점을 극복하고 수 시간 내 정확한 검출이 가능한 분자검출 제품의 개발로 세균성 질병의 피해를 조
기에 막을 수 있다.
어류 연쇄구균 감염증과 에드와드 감염증 원인세균인 에드와드시엘라 타르다(Edwardsiella tarda), 스트렙토코[0004]
카스 이니애(Streptococcus iniae), 스트렙토코카스 파라우베리스(Streptococcus parauberis) 및 락토코카스
가비에(Lactococcus garvieae)는 세계적으로 많이 양식되는 틸라피아, 방어, 무지개송어, 넙치에 감염되어 높은
폐사를 일으키고 있다. 특히, 스트렙토코카스 이니애는 사람에게 감염되어 세포염(cellulitis)을 일으킬 수 있
고 스트렙토코카스 이니애가 어류를 통해 사람에게 감염된 사례가 미국, 캐나다, 홍콩, 대만, 싱가폴에서 20건
이상 보고되고 있어 감염성 및 병원성의 판별이 중요시되고 있다.
이와 같이, 감염된 어류에서 검출되는 병원성 세균의 유전형(genotype) 및 유전체 마커를 선정하고, 상기 마커[0005]
를 이용하여 유전형에 따른 세균의 병원성을 손쉽게 분석할 수 있는 방법이 필요한 실정이다. 상기와 같은 마커
의 개발로 양식 넙치 등 어류에 빈번하게 발생하는 어류 연쇄구균 감염증과 에드와드 감염증 원인세균을 정확하
게 검출 및 판별하고, 상기 원인세균에 감염된 개체의 조기 검출을 통하여 원인세균의 정확한 동정과 어류의 항
생제 오남용 및 불필요한 어류의 생산단가 상승을 막을 수 있다.
이러한 기술적 배경하에서, 본 발명자들은 어류 연쇄구균 감염증과 에드와드 감염증 원인세균의 종을 판별하고,[0006]
상기 원인세균에 감염된 개체를 검출하는 방법을 개발하고자 예의 노력한 결과, 어류 질병 원인세균인 에드와드
시엘라 타르다, 스트렙토코카스 이니애, 스트렙토코카스 파라우베리스 및 락토코카스 가비에의 판별 및/또는 검
출용 유전자 마커를 발굴하고, 상기 유전자 마커에 특이적인 펩티드핵산 및 프라이머 쌍을 이용하여 세균 종마
다 서로 다른 형광의 증폭 및 융해곡선을 나타내게 함으로써 어류 질병 원인세균을 간단ㆍ신속ㆍ정확하게 판별
할 수 있는 효과가 있음을 확인하고, 본 발명을 완성하였다.
발명의 내용
해결하려는 과제
본 발명의 목적은 에드와드 감염증과 연쇄구균 감염증 원인세균의 판별 또는 검출용 유전자 마커, 프라이머 쌍[0007]
및 PNA 프로브를 제공하는 데 있다.
본 발명의 다른 목적은 상기 프라이머 쌍 및 상기 PNA 프로브를 포함하는 에드와드 감염증과 연쇄구균 감염증[0008]
원인세균의 판별 또는 검출용 조성물 및 키트를 제공하는 데 있다.
본 발명의 또 다른 목적은 상기 프리이머 쌍을 이용하여 증폭된 에드와드 감염증과 연쇄구균 감염증 원인세균[0009]
특이적 단일염기다형성(Single nucleotide polymorphism, SNP)을 포함하는 유전자 마커 영역에 상기 PNA 프로
브의 혼성화에 따른 Tm값을 얻어 상기 원인세균의 유형을 판별하거나 개체의 원인세균 감염 여부를 검출하는 방
법을 제공하는 데 있다.
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과제의 해결 수단
상기 목적을 달성하기 위해, 본 발명은 에드와드시엘라 타르다(Edwardsiella tarda)의 16S rDNA 유전자를 코딩[0010]
하는 DNA 염기서열 중 단일염기다형성(Single nucleotide polymorphism, SNP)을 포함하는 서열번호 8의 염기서
열로 표시되는 에드와드시엘라 타르다(Edwardsiella tarda)의 판별 또는 검출용 유전자 마커를 제공한다.
본 발명은 또한, 연쇄구균인 스트렙토코카스 이니애(Streptococcus iniae), 스트렙토코카스 파라우베리스[0011]
(Streptococcus parauberis) 또는 락토코카스 가비에(Lactococcus garvieae)의 16S rDNA 유전자를 코딩하는
DNA 염기서열 중 단일염기다형성(Single nucleotide polymorphism, SNP)을 포함하는 서열번호 9, 서열번호 10
또는 서열번호 11의 염기서열로 표시되는 연쇄구균의 판별 또는 검출용 유전자 마커를 제공한다.
본 발명은 또한, 에드와드시엘라 타르다(Edwardsiella tarda)의 16S rDNA 유전자를 코딩하는 DNA 염기서열 중[0012]
단일염기다형성(Single nucleotide polymorphism, SNP)을 포함하는 서열번호 8의 염기서열로 표시되는 유전자
마커를 증폭시키는 데 이용되는 서열번호 1 및 서열번호 2의 염기서열로 표시되는 에드와드시엘라 타르다
(Edwardsiella tarda)의 판별 또는 검출용 프라이머 쌍을 제공한다.
본 발명은 또한, 연쇄구균인 스트렙토코카스 이니애(Streptococcus iniae), 스트렙토코카스 파라우베리스[0013]
(Streptococcus parauberis) 또는 락토코카스 가비에(Lactococcus garvieae)의 16S rDNA 유전자를 코딩하는
DNA 염기서열 중 단일염기다형성(Single nucleotide polymorphism, SNP)을 포함하는 서열번호 9, 서열번호 10
또는 서열번호 11의 염기서열로 표시되는 유전자 마커를 증폭시키는 데 이용되는 서열번호 1 및 서열번호 3의
염기서열로 표시되는 연쇄구균의 판별 또는 검출용 프라이머 쌍을 제공한다.
본 발명은 또한, 에드와드시엘라 타르다(Edwardsiella tarda)의 서열번호 8의 염기서열로 표시되는 16S rDNA 유[0014]
전자 마커에 포함된 단일염기다형성(Single nucleotide polymorphism, SNP)과 상응하는 서열번호 4의 염기서열
로 표시되는 에드와드시엘라 타르다(Edwardsiella tarda)의 판별 또는 검출용 PNA 프로브를 제공한다.
본 발명은 또한, 연쇄구균인 스트렙토코카스 이니애(Streptococcus iniae), 스트렙토코카스 파라우베리스[0015]
(Streptococcus parauberis) 또는 락토코카스 가비에(Lactococcus garvieae)의 서열번호 9, 서열번호 10 또는
서열번호 11의 염기서열로 표시되는 16S rDNA 유전자 마커에 포함된 단일염기다형성(Single nucleotide
polymorphism, SNP)과 상응하는 서열번호 5, 서열번호 6 또는 서열번호 7의 염기서열로 표시되는 연쇄구균의 판
별 또는 검출용 PNA 프로브를 제공한다.
본 발명은 또한, 상기 프라이머 쌍 및 상기 PNA 프로브를 포함하는 에드와드시엘라 타르다(Edwardsiella tarda)[0016]
또는 연쇄구균의 판별 또는 검출용 조성물 및 키트를 제공한다.
본 발명은 또한, (a) 검체 시료로부터 표적 핵산을 추출하는 단계; (b) 상기 표적 핵산에 포함된 에드와드시엘[0017]
라 타르다(Edwardsiella tarda) 또는 연쇄구균의 유전자 마커 염기서열을 상기 프라이머 쌍을 이용하여 증폭시
키고, 상기 증폭된 유전자 마커 염기서열에 상기 PNA 프로브를 혼성화시키는 단계; (c) 상기 (b) 단계에서 PNA
프로브로 혼성화된 산물의 온도를 높이면서 온도별 융해곡선을 얻는 단계; 및 (d) 상기 (c) 단계에서 얻은 융해
곡선의 분석을 통해 융해온도로부터 에드와드시엘라 타르다(Edwardsiella tarda) 또는 연쇄구균의 세균 종을 판
별하거나 어류의 상기 세균 종의 감염 여부를 검출하는 단계를 포함하는 에드와드시엘라 타르다(Edwardsiella
tarda) 또는 연쇄구균의 판별 또는 검출 방법을 제공한다.
발명의 효과
본 발명은 어류 질병 원인세균인 에드와드시엘라 타르다, 스트렙토코카스 이니애, 스트렙토코카스 파라우베리스[0018]
및 락토코카스 가비에의 판별 및/또는 검출용 유전자 마커를 선정하고, 상기 유전자 마커에 특이적인 펩티드핵
산 및 프라이머 쌍을 이용하여 세균 종마다 서로 다른 형광의 증폭 및 융해곡선을 나타내게 함으로써 어류 질병
원인세균을 간단ㆍ신속ㆍ정확하게 판별하고, 어류의 상기 세균의 감염 여부를 검출할 수 있는 효과가 있다.
도면의 간단한 설명
등록특허 10-1677948
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도 1은 세균 종의 판별 및 개체의 세균 감염 검출용 증폭 곡선을 얻는 단계의 기술적 특징을 나타내는 개념도이[0019]
다.
도 2는 세균 종의 판별 방법 및 개체의 세균 감염 검출 방법에 있어, 펩티드핵산의 혼성화에 따른 융해곡선을
얻는 단계를 나타내는 모식도이다.
도 3은 세균 종의 판별 및 개체의 세균 감염 검출을 위한 리얼타임 PCR(Real-Time Polymerase Chain Reactio
n)의 반응조건을 나타낸 것이다.
도 4는 Streptococcus parauberis의 판별 및 검출용 16S rDNA 유전자 특이적 펩티드핵산이 포함하고 있는 염
기변이 부위를 설명하기 위한 유전자 위치도이다.
도 5는 Lactococcus garvieae의 판별 및 검출을 결정하는 16S rDNA 유전자 특이적 펩티드핵산이 포함하고 있는
염기변이 부위를 설명하기 위한 유전자 위치도이다.
도 6은 Edwardsiella tarda 및 Streptococcus iniae의 판별 및 검출을 결정하는 16S rDNA 유전자 특이적 펩티
드핵산이 포함하고 있는 염기변이 부위를 설명하기 위한 유전자 위치도이다.
도 7은 3종의 연쇄구균(Streptococcus iniae, Streptococcus parauberis, Lactococcus garvieae)의 PCR 증폭을
위한 16S rDNA 유전자 특이적 프라이머가 포함하고 있는 염기변이 부위를 설명하기 위한 유전자 위치도이다.
도 8은 Edwardsiella tarda의 PCR을 위한 16S rDNA 유전자 특이적 프라이머가 포함하고 있는 염기변이 부분의
일례를 설명하기 위한 유전자 위치도이다.
도 9는 세균 종의 판별 및 검출용 펩티드핵산 프로브 및 프라이머를 이용한 Edwardsiella tarda(E. tarda)의 증
폭곡선과 융해곡선 그래프를 나타낸 것이다.
도 10은 세균 종의 판별 및 검출용 펩티드핵산 프로브 및 프라이머를 이용한 Streptococcus iniae(S. iniae)의
증폭곡선과 융해곡선 그래프를 나타낸 것이다.
도 11은 세균 종의 판별 및 검출용 펩티드핵산 프로브 및 프라이머를 이용한 Streptococcus parauberis(S.
parauberis)의 증폭곡선과 융해곡선 그래프를 나타낸 것이다.
도 12는 세균 종의 판별 및 검출용 펩티드핵산 프로브 및 프라이머를 이용한 Lactococcus garvieae의 증폭곡선
과 융해곡선 그래프를 나타낸 것이다.
도 13은 숙주(어류)가 동시에 4종의 세균(Streptococcus iniae, Streptococcus parauberis, Lactococcus
garvieae, Edwardsiella tarda)에 감염되는 경우, 균주별 증폭곡선과 융해곡선 그래프를 나타낸 것이다.
발명을 실시하기 위한 구체적인 내용
다른 식으로 정의되지 않는 한, 본 명세서에서 사용된 모든 기술적 및 과학적 용어들은 본 발명이 속하는 기술[0020]
분야에서 숙련된 전문가에 의해서 통상적으로 이해되는 것과 동일한 의미를 갖는다. 일반적으로 본 명세서에서
사용된 명명법은 본 기술 분야에서 잘 알려져 있고 통상적으로 사용되는 것이다.
본 발명은 일 양태에서 어류 에드와드 감염증과 연쇄구균 감염증 원인세균의 판별 및 검출용 유전자 마커로 세[0021]
균 종을 판별하고, 어류의 상기 세균 종의 감염 여부를 검출하는 방법을 개발하고자, 상기 세균의 16S rDNA의
염기서열을 확보하였으며, CLC Genomic workbench 8.0.1로 세균 종마다 대표(consesus) 서열을 제작한 다음,
clustal W alignment로 유전자를 비교분석하였다. 유전자 분석을 통해 선정된 에드와드시엘라 타르다
(Edwardsiella tarda)와 연쇄구균인 스트렙토코카스 이니애(Streptococcus iniae), 스트렙토코카스 파라우베리
스(Streptococcus parauberis) 및 락토코카스 가비에(Lactococcus garvieae)의 16S rDNA 유전자를 코딩하는
DNA 염기서열 중 단일염기다형성(Single nucleotide polymorphism, SNP)을 포함하는 유전자 마커(부위)를 표적
으로 선정하고, 상기 유전자 마커에 대응되는 세균 종 판별용 프라이머 쌍 및 PNA 프로브를 이용하여 어류 에드
와드 감염증과 연쇄구균 감염증 원인세균의 종을 검출하고 판별할 수 있었다.
더욱 상세하게 설명하면, 상기 세균의 16S rDNA의 염기서열을 비교분석하여 도출된 서열번호 8~서열번호 11의[0022]
염기서열을 가지는 유전자 마커를 토대로 제작된 서열번호 1~서열번호 3의 염기서열을 가지는 프라이머, 및 서
열번호 4~서열번호 7의 염기서열을 가지는 PNA 프로브를 이용하여 리얼타임 PCR(Real-Time Polymerase Chain
Reaction)을 통해 세균 유래 DNA로부터 증폭 및 융해곡선을 얻었으며, 상기 융해곡선으로부터 융해온도(Tm)를
확인한 결과, 후술하는 실시예에서 확인할 수 있는 바와 같이, 세균 종별로 서로 다른 형광의 융해곡선 결과를
등록특허 10-1677948
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얻을 수 있었다.
따라서, 본 발명은 일 관점에서, 에드와드시엘라 타르다(Edwardsiella tarda)의 16S rDNA 유전자를 코딩하는[0023]
DNA 염기서열 중 단일염기다형성(Single nucleotide polymorphism, SNP)을 포함하는 서열번호 8의 염기서열로
표시되는 에드와드시엘라 타르다(Edwardsiella tarda)의 판별 또는 검출용 유전자 마커에 관한 것이다.
본 발명은 다른 관점에서, 연쇄구균인 스트렙토코카스 이니애(Streptococcus iniae), 스트렙토코카스 파라우베[0024]
리스(Streptococcus parauberis) 또는 락토코카스 가비에(Lactococcus garvieae)의 16S rDNA 유전자를 코딩하
는 DNA 염기서열 중 단일염기다형성(Single nucleotide polymorphism, SNP)을 포함하는 서열번호 9, 서열번호
10 또는 서열번호 11의 염기서열로 표시되는 연쇄구균의 판별 또는 검출용 유전자 마커에 관한 것이다.
본 발명은 또 다른 관점에서, 에드와드시엘라 타르다(Edwardsiella tarda)의 16S rDNA 유전자를 코딩하는 DNA[0025]
염기서열 중 단일염기다형성(Single nucleotide polymorphism, SNP)을 포함하는 서열번호 8의 염기서열로 표시
되는 유전자 마커를 증폭시키는 데 이용되는 서열번호 1 및 서열번호 2의 염기서열로 표시되는 에드와드시엘라
타르다(Edwardsiella tarda)의 판별 또는 검출용 프라이머 쌍에 관한 것이다.
본 발명은 또 다른 관점에서, 연쇄구균인 스트렙토코카스 이니애(Streptococcus iniae), 스트렙토코카스 파라우[0026]
베리스(Streptococcus parauberis) 또는 락토코카스 가비에(Lactococcus garvieae)의 16S rDNA 유전자를 코딩
하는 DNA 염기서열 중 단일염기다형성(Single nucleotide polymorphism, SNP)을 포함하는 서열번호 9, 서열번
호 10 또는 서열번호 11의 염기서열로 표시되는 유전자 마커를 증폭시키는 데 이용되는 서열번호 1 및 서열번호
3의 염기서열로 표시되는 연쇄구균의 판별 또는 검출용 프라이머 쌍에 관한 것이다.
본 발명은 또 다른 관점에서, 에드와드시엘라 타르다(Edwardsiella tarda)의 서열번호 8의 염기서열로 표시되는[0027]
16S rDNA 유전자 마커에 포함된 단일염기다형성(Single nucleotide polymorphism, SNP)과 상응하는 서열번호 4
의 염기서열로 표시되는 에드와드시엘라 타르다(Edwardsiella tarda)의 판별 또는 검출용 PNA 프로브에 관한 것
이다.
본 발명은 또 다른 관점에서, 연쇄구균인 스트렙토코카스 이니애(Streptococcus iniae), 스트렙토코카스 파라우[0028]
베리스(Streptococcus parauberis) 또는 락토코카스 가비에(Lactococcus garvieae)의 서열번호 9, 서열번호 10
또는 서열번호 11의 염기서열로 표시되는 16S rDNA 유전자 마커에 포함된 단일염기다형성(Single nucleotide
polymorphism, SNP)과 상응하는 서열번호 5, 서열번호 6 또는 서열번호 7의 염기서열로 표시되는 연쇄구균의 판
별 또는 검출용 PNA 프로브에 관한 것이다.
본 발명의 상기 PNA 프로브는 양 말단에 리포터(reporter)와 리포터 형광을 소광(quenching)할 수 있는 소광자[0029]
(quencher)의 형광 물질이 결합할 수 있다. 상기 리포터(reporter)는 FAM(6-carboxyfluorescein), Texas red,
HEX(2',4',5',7',-tetrachloro-6-carboxy-4,7-dichlorofluorescein), JOE, Cy3 및 Cy5로 구성되는 군에서 선택
되는 하나 이상일 수 있으며, 상기 소광자는 TAMRA(6-carboxytetramethyl-rhodamine), BHQ1, BHQ2 및 Dabcyl로
구성되는 군에서 선택되는 하나 이상일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니며, 바람직하게는 Dabcyl(FAM-
labeled)을 사용할 수 있다.
펩티드핵산(Peptide nucleic acid, PNA)은 핵산염기가 인산 결합이 아닌 펩티드 결합으로 연결된 유사 DNA로[0030]
1991년에 Nielsen 등에 의해 처음으로 합성되었다. PNA는 자연계에서는 발견되지 않고 인공적으로 화학적인 방
법으로 합성된다.
펩티드핵산은 LNA(Locked nucleic acid) 또는 MNA(Mopholino nucleic acid)와 같이 유전자 인식물질의 하나로[0031]
인공적으로 합성하며, 기본 골격이 포리아미드(polyamide)로 구성되어 있다. PNA는 친화도(affinity)와 선택성
(selectivity)이 매우 우수하며, 핵산분해효소에 대한 안정성이 높아 현존하는 제한효소(restriction enzyme)로
분해되지 않는다. 또한, 열/화학적으로 물성 및 안정성이 높아 보관이 용이하고 쉽게 분해되지 않는 장점이 있
다.
PNA는 상보적인 염기 서열의 천연 핵산과 혼성화(hybridization) 반응을 통해 이중가닥을 형성한다. 길이가 같[0032]
은 경우 PNA/DNA 이중가닥은 DNA/DNA 이중가닥보다, PNA/RNA 이중가닥은 DNA/RNA 이중가닥보다 안정하다. 또한,
PNA는 단일 염기 부정합(single base mismatch) 때문에 이중 가닥이 불안정해지는 정도가 크기 때문에
SNP(single nucleotide polymorphism)를 검출하는 능력이 천연핵산보다 더 뛰어나다
또한, DNA-DNA 결합력보다 PNA-DNA 결합력이 매우 우수하여 1개의 뉴클레오티드 미스 매치(nucleotide miss[0033]
match)에도 10~15℃ 가량 차이가 난다. 이러한 결합력의 차이를 이용하여 SNP(Single-nucleotide
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polymorphism) 및 In/Del의 뉴클레오티드(nucleotide)의 변화를 검출(detection)할 수 있게 된다.
본 발명에 따른 PNA 염기서열의 길이는 특별히 제한되지는 않지만, 세균 종의 SNP가 포함되도록 12~18mer 길이[0034]
로 제작할 수 있다. 이때, PNA 프로브의 길이를 조절하여 원하는 Tm값을 가지도록 PNA 프로브를 디자인할 수도
있고, 같은 길이의 PNA 프로브라도 염기서열에 변화를 주어 Tm값을 조절하는 것도 가능하다. 또한, PNA 프로브
는 DNA보다 결합력이 우수하여 기본적인 Tm값이 높기 때문에 DNA보다 짧은 길이로 디자인이 가능하여 가깝게 이
웃한 SNP라도 검출이 가능하다. 기존의 HRM(High Resolution Melt) 방법에 의하면 Tm값의 차이가 약 0.5℃로
매우 적어서 추가적인 분석프로그램이나 세밀한 온도 변화 또는 보정을 필요로 하고, 이 때문에 2개 이상의 SNP
가 나타날 경우에는 분석이 어려웠지만, 본 발명에 따른 PNA 프로브는 PNA 프로브의 서열과 SNP에 대해서는 영
향을 받지 않아 간편하게 분석이 가능하다.
본 발명에서와 같이, PNA 프로브가 14개의 염기서열을 포함하는 경우에는, 가운데 염기서열 중 하나 이상의 위[0035]
치에 세균의 SNP 부위에 상응하는 서열을 가지는 것이 바람직하다. 또한, PNA 프로브는 염기서열의 가운데 부분
에 세균의 SNP 부위에 상응하는 서열을 포함하여 구조적인 변형을 가질 수 있고, 이를 통해 완전한 혼성화를 이
루는 표적 핵산(perfect match)과의 융해온도(Tm) 차이를 더욱 크게 할 수 있다.
본 발명은 또 다른 관점에서, 상기 프라이머 쌍 및 상기 PNA 프로브를 포함하는 에드와드시엘라 타르다[0036]
(Edwardsiella tarda) 또는 연쇄구균의 판별 또는 검출용 조성물 및 키트에 관한 것이다.
본 발명에 있어서, 상기 연쇄구균은 스트렙토코카스 이니애(Streptococcus iniae), 스트렙토코카스 파라우베리[0037]
스(Streptococcus parauberis) 또는 락토코카스 가비에(Lactococcus garvieae)인 것을 특징으로 할 수 있다.
본 발명의 키트는 버퍼, DNA 중합효소 조인자 및 데옥시리보뉴클레오타이드-5-트리포스페이트와 같은 표적 핵산[0038]
증폭 반응(예컨대, PCR 반응)을 실시하는데 필요한 시약을 선택적으로 포함할 수 있다. 선택적으로, 본 발명의
키트는 또한 다양한 폴리뉴클레오타이드 분자, 역전사효소, 다양한 버퍼 및 시약, 및 DNA 중합효소 활성을 억제
하는 항체를 포함할 수 있다. 또한, 상기 키트는 특정 반응에서 사용되는 시약의 최적량은, 본 명세서에 개시사
항을 습득한 당업자에 의해서 용이하게 결정될 수 있다. 전형적으로, 본 발명의 키트는 앞서 언급된 구성 성분
들을 포함하는 별도의 포장 또는 컴파트먼트(compartment)로 제작될 수 있다.
상기 키트를 이용하면, PNA 프로브에 의한 용해곡선 분석을 통하여 표적 핵산의 단일염기변이 및 염기의 결손[0039]
또는 삽입에 의한 변이를 효과적으로 검출할 수 있고, 이를 통하여 세균 종 판별이 가능하다.
본 발명은 또 다른 관점에서, (a) 검체 시료로부터 표적 핵산을 추출하는 단계; (b) 상기 표적 핵산에 포함된[0040]
에드와드시엘라 타르다(Edwardsiella tarda) 또는 연쇄구균의 유전자 마커 염기서열을 상기 프라이머 쌍을 이용
하여 증폭시키고, 상기 증폭된 유전자 마커 염기서열에 상기 PNA 프로브를 혼성화시키는 단계; (c) 상기 (b) 단
계에서 PNA 프로브로 혼성화된 산물의 온도를 높이면서 온도별 융해곡선을 얻는 단계; 및 (d) 상기 (c) 단계에
서 얻은 융해곡선의 분석을 통해 융해온도로부터 에드와드시엘라 타르다(Edwardsiella tarda) 또는 연쇄구균의
세균 종을 판별하거나 어류의 상기 세균 종의 감염 여부를 검출하는 단계를 포함하는 에드와드시엘라 타르다
(Edwardsiella tarda) 또는 연쇄구균의 판별 또는 검출 방법에 관한 것이다.
본 발명에 있어서, 상기 연쇄구균은 스트렙토코카스 이니애(Streptococcus iniae), 스트렙토코카스 파라우베리[0041]
스(Streptococcus parauberis) 또는 락토코카스 가비에(Lactococcus garvieae)인 것을 특징으로 할 수 있다.
본 발명에 있어서, 상기 증폭은 실시간 PCR(Real-Time Polymerase Chain Reaction)방법으로 수행하는 것을 특[0042]
징으로 할 수 있다.
본 발명에 있어서, 2 이상의 표적 핵산을 사용하고, PNA 프로브에 표지되는 리포터를 표적 핵산별로 다르게 하[0043]
여, 2 이상의 표적 핵산 검출을 통해 하나 이상의 에드와드시엘라 타르다(Edwardsiella tarda) 및 연쇄구균의
세균 종을 판별 또는 검출하는 것을 특징으로 할 수 있다.
본 발명에서 "검체 시료"는 다양한 시료를 포함하며, 바람직하게는, 본 발명의 방법을 이용하여 생물시료[0044]
(biosample)를 분석한다. 보다 바람직하게는, 본 발명에 기재된 에드와드시엘라 타르다(Edwardsiella tarda) 및
/또는 연쇄구균의 세균 종과 혼합된 시료이거나 상기 세균에 감염된 개체(예컨대, 어류 등)의 시료일 수
있으며, 식물, 동물, 인간, 균류, 박테리아 및 바이러스 기원의 생물시료가 분석될 수 있다. 포유류 또는 인간
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기원의 시료를 분석하는 경우, 상기 시료는 특정 조직 또는 기관으로부터 유래될 수 있다. 조직의 대표적인 예
로는, 결합, 피부, 근육 또는 신경 조직이 포함된다. 기관의 대표적인 예로는, 눈, 뇌, 폐, 간, 비장, 골수, 흉
선, 심장, 림프, 혈액, 뼈, 연골, 췌장, 신장, 담낭, 위, 소장, 고환, 난소, 자궁, 직장, 신경계, 선 및 내부
혈관이 포함된다. 분석되는 생물시료는 생물학적 근원으로부터 나온 어떠한 세포, 조직, 유체액(fluid), 또는
본 발명에 의하여 잘 분석될 수 있는 어떠한 다른 매질(medium)도 포함하며, 이는 인간, 동물, 인간 또는 동물
의 소비를 위하여 제조된 음식으로부터 얻은 시료가 포함된다. 또한, 분석되는 생물시료는 체액 시료를 포함하
며, 이는 혈액, 혈청, 혈장, 림프, 모유, 소변, 분변, 안구 유액, 타액, 정액, 뇌 추출물(예컨대, 뇌 분쇄물),
척수액, 충수, 비장 및 편도선 조직 추출물이 포함되나, 이에 한정되는 것은 아니다.
본 발명의 '표적 핵산', '합성 DNA' 또는 '인공합성 올리고'는 검출 여부를 판별하고자 하는 핵산 서열(SNP 포[0045]
함)을 의미하며, 생리ㆍ생화학적 기능을 가지는 단백질을 코딩하는 '표적 유전자'의 핵산 서열의 특정 부위를
포함하고, 혼성화, 어닐링 또는 증폭 조건 하에서 프라이머 또는 프로브와 어닐링 또는 혼성화된다.
본 발명의 '혼성화'는 상보적인 단일가닥 핵산들이 이중-가닥 핵산을 형성하는 것을 의미한다. 혼성화는 2개의[0046]
핵산 가닥 간의 상보성이 완전할 경우(perfect match) 일어나거나 또는 일부 부정합(mismatch) 염기가 존재하여
도 일어날 수 있다. 혼성화에 필요한 상보성의 정도는 혼성화 조건에 따라 달라질 수 있으며, 특히 온도에 의하
여 조절될 수 있다.
본 발명에 있어서, 상기 융해곡선 분석은 FMCA(Fluorescence Melting Curve Analysis; 형광융해곡선분석) 방법[0047]
으로 수행하는 것을 특징으로 할 수 있다.
본 발명의 리포터 및 소광자가 포함된 PNA 프로브는 표적 핵산과 혼성화된 후 형광 신호가 발생하며, 온도가 올[0048]
라감에 따라 프로브의 적정 융해 온도에서 표적 핵산과 빠르게 융해되어 형광 신호가 소광되며, 이러한 온도 변
화에 따른 상기 형광 신호로부터 얻어진 고해상도의 융해곡선 분석을 통하여 표적 핵산의 염기 변성(SNP 포함)
유무를 검출할 수 있다. 상기 PNA 프로브는 표적 핵산 염기서열과 완전한 혼성화(perfect match)를 이루는 경우
예상된 융해온도(Tm) 값을 보이지만, 염기변이가 존재하는 표적 핵산과는 불완전한 혼성화(mismatch)를 이루어
서 예상보다 낮은 융해온도(Tm) 값을 보이는 것이 특징이다.
본 발명의 '염기변이'는 표적 핵산의 염기서열에 변이가 일어난 것으로, 단일염기 다형성(SNP; single[0049]
nucleotide polymorphism)뿐만 아니라, 염기의 치환, 결실 또는 삽입되어 변이가 일어난 것을 포함하는 것을 특
징으로 하며, 본 발명의 PNA 프로브는 표적 핵산의 SNP 또는 표적 핵산의 염기가 치환, 결실 또는 삽입되어 변
이가 일어난 것을 융해곡선 분석을 통해 분석할 수 있다.
본 발명의 상기 PNA 프로브는 양 말단에 리포터(reporter)와 리포터 형광을 소광(quenching)할 수 있는 소광자[0050]
(quencher)의 형광 물질이 결합할 수 있다. 상기 리포터(reporter)는 FAM(6-carboxyfluorescein), Texas red,
HEX(2',4',5',7',-tetrachloro-6-carboxy-4,7-dichlorofluorescein), JOE, Cy3 및 Cy5로 구성되는 군에서 선택
되는 하나 이상일 수 있으며, 상기 소광자는 TAMRA(6-carboxytetramethyl-rhodamine), BHQ1, BHQ2 및 Dabcyl로
구성되는 군에서 선택되는 하나 이상일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니며, 바람직하게는 Dabcyl(FAM-
labeled)을 사용할 수 있다.
PNA 프로브의 뉴클레오티드와 이에 상보적으로 결합하는 DNA의 뉴클레오티드의 차이에 따라서도 Tm값의 변화를[0051]
나타내어 이를 이용한 애플리케이션(application)의 개발이 용이하다. PNA 프로브는 TaqMan 프로브의 가수분해
방법(hydrolysis method)과는 다른 혼성화방법(hybridization method)를 이용하여 분석하며 비슷한 역할을 하
는 프로브로는 분자 비컨 프로브(molecular beacon probe), 스코피언 프로브(scorpion probe)가 있다.
PNA 프로브를 이용한 SNP(Single-nucleotide polymorphism) 분석을 위해서는 우선 SNP를 포함하는 부분의 염기[0052]
를 이용한 프로브와 PCR을 위한 정방향/역방향(Forward/Reverse) 프라이머 세트만 있으면 충분하다. 상기 PCR
조건은 기존의 방법을 사용가능하며 PCR이 끝난 후 융해(melting) 과정이 필요하고 0.5℃ 씩 증가할 때마다 형
광의 세기를 측정하여 Tm값을 얻는다. 특히 일반적인 실시간 PCR(real-time PCR) 장치는 널리 보급되어 있으며
HRM(High resolution melting)과 같이 부가적인 프로그램 구입이나 세밀한 온도변화를 요구하지 않는 장점이 있
다.
본 발명의 융해곡선 분석은 표적 핵산인 DNA 또는 RNA와 프로브로 형성되는 이중쇄 핵산의 융해온도를 해석하는[0053]
방법이다. 이러한 방법은 예컨대, Tm 해석, 또는 상기 이중쇄의 융해곡선의 해석에 의해 행해지기 때문에, 융해
곡선 분석이라고 불리고 있다. 검출 목적의 변이(SNP 포함)를 포함하는 검출 대상 서열에 상보적인 프로브를 이
용하여, 검출 시료의 표적 단일쇄 DNA와 상기 프로브와의 하이브리드(이중쇄 DNA)를 형성시킨다. 계속해서, 이
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하이브리드 형성체에 가열 처리를 실시하고, 온도 상승에 따른 하이브리드의 해리(융해)를, 흡광도 등의 시그널
의 변동에 의해 검출한다. 그리고, 이 검출 결과에 기초하여 Tm값을 결정함으로써, 점돌연변이(SNP 포함)의 유
무를 판단하는 방법이다. Tm값은 하이브리드 형성체의 상동성이 높을수록 높고, 상동성이 낮을수록 낮아진다.
이 때문에, 점돌연변이를 포함하는 검출 대상 서열과 그것에 상보적인 프로브와의 하이브리드 형성체에 대해서
미리 Tm값(평가 기준값)을 구해 두고, 검출 시료의 표적 단일쇄 DNA와 상기 프로브와의 Tm값(측정값)을 측정하
여, 측정값이 평가 기준값과 동일한 정도이면, 매치, 즉 표적 DNA에 돌연변이(SNP 포함)가 존재한다고 판단할
수 있고, 측정값이 평가 기준값 보다 낮으면, 미스매치, 즉 타겟 DNA에 변이가 존재하지 않는다고 판단할 수 있
다.
본 발명의 형광융해곡선 분석은 형광물질을 사용하여 융해곡선을 분석하는 방법으로, 보다 구체적으로, 형광물[0054]
질을 포함하는 프로브를 이용하여 융해곡선을 분석할 수 있다. 형광물질은 리포터 및 소광자일 수 있으며, 인터
컬레이팅 형광물질일 수 있다.
본 발명의 리얼타임 PCR(Real-Time Polymerase Chain Reaction) 방법은, 형광물질이 PCR 과정에서 이중가닥[0055]
(double strand) DNA 사슬에 결합(interchelating)되도록 하고 PCR 산물의 증폭과 함께, 온도를 높여 주어 DNA
이중 가닥을 풀어줌으로써 DNA 이중 가닥 사이에 존재하는 형광물질의 양이 줄어들게 되는 융해곡선의 패턴, 특
히 DNA가 융해(변성)되는 온도(Tm)를 분석하여 정상 대조군과 돌연변이(SNP 포함) 사이에서 염기서열의 변이 유
무를 분석할 수 있다.
이하, 실시예를 통하여 본 발명을 더욱 상세히 설명하고자 한다. 이들 실시예는 오로지 본 발명을 예시하기 위[0056]
한 것으로서, 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되는 것으로 해석되지 않는 것은 당업계에서 통상의 지
식을 가진 자에 있어서 자명할 것이다.
실시예 1: 어류 에드와드 감염증 원인세균과 연쇄구균 감염증 원인세균의 판별 및 검출용 유전자 마커, 및 상기[0057]
세균에 특이적인 프라이머 및 PNA 프로브 제작
어류 감염증 원인세균들 중에서 한국의 양식 넙치 등 어류에서 분리된 461개의 분리 균주를 대상으로 세균 16S[0058]
rDNA 유전자의 유전형을 구분하기 위하여 16S rDNA의 염기서열을 Sanger sequencing을 통하여 확보하였으며,
CLC Genomic workbench 8.0.1을 사용하여 세균 종마다 해당되는 대표 서열을 제작하여 clustal W alignment를
사용하여 비교분석하였다. 유전형 분석을 통해 3종의 연쇄구균(Streptococcus iniae, Streptococcus
parauberis, Lactococcus garviae) 및 Edwardsiella tarda에 특이적인 염기 부위(서열번호 8~서열번호 11)를
세균 종의 판별 및 검출용 유전자 마커로 선정하였다.
더욱 상세하게 설명하면, 16S rDNA 유전자를 코딩하는 DNA 염기서열 중 단일염기다형성(Single nucleotide[0059]
polymorphism, SNP)을 포함하는 유전자 마커가, Streptococcus iniae 16S rDNA 유전자의 경우 유전형 마커 부
위는 5'-CATGTGTACTCTAG-3’서열(Streptococcus iniae 16S rDNA marker: 서열번호 8)을 포함하고,
Streptococcus parauberis 16S rDNA 유전자의 경우 유전형 마커 부위는 5'-CAAGCACCAGTCTT-3’서열
(Streptococcus parauberis 16S rDNA marker: 서열번호 9)을 포함하며, Lactococcus garvieae 16S rDNA 유전자
의 경우 유전형 마커 부위는 5‘-CTACTCGGCAGATT-3’서열(Lactococcus garvieae 16S rDNA marker: 서열번호
10)을 포함하고, Edwardsiella tarda 16S rDNA 유전자의 경우 유전형 마커 부위는 5'-TGGTCTTGCGACGT-3’서열
(Edwardsiella tarda 16S rDNA marker: 서열번호 11)이 포함되도록 제조하였다.
또한, 3종의 연쇄구균(Streptococcus iniae, Streptococcus parauberis, Lactococcus garviae) 또는[0060]
Edwardsiella tarda의 존재 여부를 확인하고 검출용으로 사용하기 위하여 16S rDNA 특정 부위의 증폭 가능한 프
라이머를 Edwardsiella tarda에 특이적인 역방향 프라이머(reverse primer)(서열번호 2) 및 Streptococcus
iniae, Streptococcus parauberis, Lactococcus garvieae에 특이적인 유니버설 역방향 프라이머(universal
reverse primer)(서열번호 3)로 제작하였다.
여기서, Edwardsiella tarda 16S rDNA 유전자의 증폭 가능한 프라이머(서열번호 2)는 "5'-ATGCCATCAGATGAACCC-[0061]
3’" 서열과 상보성을 갖고, 3종의 연쇄구균(Streptococcus iniae, Streptococcus parauberis 및 Lactococcus
garvieae)의 16S rDNA 특정 부위의 증폭 가능한 유니버설 역방향 프라이머(universal reverse primer)(서열번
호 3)는 "5'-ACCAGAAAGGGACGGCTA-3’" 서열과 상보적이 되도록 제작하였다.
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아울러, 순방향 프라이머로는 세균 16S rDNA의 유니버설 순방향 프라이머 27F(universal forward[0062]
primer(27F))(서열번호 1)를 사용하였다(Lane et al., 1991).
본 발명에서 사용한 PNA 프로브는 PNA 프로브 디자이너(Applied Biosystems, 미국)를 이용하여 설계하였고, 상[0063]
기 PNA 프로브에 세균 특이적 염기서열과 리포터 및 소광자를 포함시켜 제작하였다. 이때, 상기 PNA 프로브는
같은 형광이 포함되지 않도록 각각 FAM, HEX, TexasRed, Cy5를 결합하여 제작하였다.
본 발명에서 사용한 모든 PNA 프로브(FAM-labeled, Dabcyl)는 파나진(Panagene, 한국)에서 HPLC 정제 방법으로[0064]
합성하였고, 합성된 모든 프로브의 순도는 질량분석법으로 확인하였다(표적 핵산과의 효과적인 결합을 위해 프
로브의 불필요한 이차구조는 피하였다).
도 4~도 6은 본 발명에 따른 상기 4종의 세균(Streptococcus iniae, Streptococcus parauberis, Lactococcus[0065]
garvieae, Edwardsiella tarda)의 16S rDNA 유전자 일부와 SNP 및 이로부터 도출된 펩티드핵산(peptide
nucleic acid, PNA)의 염기서열 일례를 나타내는 염기서열도이고, 도 7~도 8은 본 발명에 따른 세균 16S rDNA
유전자 상에서 프라이머 위치를 포함하고 있는 부위의 일례를 설명하기 위한 유전자 위치도이다. 도 4~도
8에서, 각 PNA 프로브에 따른 염기서열은 초록색으로 표기하였고, 세균 별 특이적인 염기서열은 검정색으로 표
기하였다.
그 결과, 본 발명에 따른 PNA 및 프라이머 염기서열을 결정하였고, 표 1에 나타내었다. [0066]
표 1
구분[0067] 이름 서열번호 서열(5'-> 3') 변형 타깃
프라이머 Universal forward
Primer(27F)
서열번호1 AGAGTTTGATCCTGGCTCAG - Bacterial 16S rDNA
Reverse primer 서열번호2 GGGTTCATCTGATGGCAT - Edwardsiella tarda
Universal reverse
primer
서열번호3 TAGCCGTCCCTTTCTGGT - Streptococcus iniae,
Streptococcus parauberis,
Lactococcus garvieae
PNA
프로브
PNA 1 서열번호4 ACGTCGCAAGACCA Dabsyl,
FAM
Edwardsiella tarda
PNA 2 서열번호5 CTAGAGTACACATG Dabsyl,
TexasRed
Streptococcus iniae
PNA 3 서열번호6 AAGACTGGTGCTTG Dabsyl,
HEX
Streptococcus parauberis
PNA 4 서열번호7 AATCTGCCGAGTAG Dabsyl,
Cy5
Lactococcus garvieae
16S rDNA
마커
Edwardsiella
tarda_16S rDNA
marker
서열번호8 TGGTCTTGCGACGT - Edwardsiella tarda
Streptococcus
iniae_16S rDNA
marker
서열번호9 CATGTGTACTCTAG - Streptococcus iniae
Streptococcus
parauberis_16S rDNA
marker
서열번호1
0
CAAGCACCAGTCTT - Streptococcus parauberis
Lactococcus
garvieae_16S rDNA
marker
서열번호1
1
CTACTCGGCAGATT - Lactococcus garvieae
실시예 2: 리얼타임 PCR(Real-Time Polymerase Chain Reaction) 및 융해곡선의 분석을 통한 4종의 세균 유전자[0068]
판별방법
실시예 1의 세균 특이적 유전자 마커, PNA 프로브 및 프라이머를 이용하여, 4종의 세균(Streptococcus iniae,[0069]
Streptococcus parauberis, Lactococcus garvieae, Edwardsiella tarda)의 DNA 샘플에 대하여 증폭곡선 및 용
해곡선을 도출하였고, 이를 분석하여 세균 종을 판별하고자 하였다.
PCR은 CFX96™ Real-Time 시스템(BIO-RAD 사, 미국)을 이용하여 수행하였으며, 모든 실험 조건은 단일가닥 표적[0070]
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핵산을 생성하기 위해 비대칭 PCR(asymmetric PCR)을 이용하였다. 비대칭 PCR의 조건은 다음과 같다; 총 볼륨이
20㎕이 되도록 2X PNA qPCR PCR MasterMix(시선바이오머티리얼스, 한국), 0.1μM 순방향 프라이머(forward
primer) 및 1μM 역방향 프라이머(reverse primer)에 4종의 PNA 프로브 혼합물 1μM, 10ng 세균 유래 DNA를 첨
가한 다음 실시간 PCR을 수행하였다.
도 3은 세균 종의 판별 및 검출을 위한 리얼타임 PCR의 반응조건을 도시한 것으로, 세균 유래 DNA의 유전자 마[0071]
커 부위를 증폭 및 혼성화시키고, 상기 혼성화된 산물의 온도를 높이는 과정을 그래프로 나타내었다. 여기서,
리얼타임 PCR 과정은 95℃에서 10분간 변성시킨 다음, 95℃에서 30초, 58℃에서 45초, 74℃에서 45초 동안 반응
시켰으며, 이를 40 사이클 반복하였고, 실시간으로 형광을 측정하였다. 융해곡선 분석은 95℃에서 5분간 변성
단계를 거친 다음, 80℃에서 30초, 60℃에서 30초, 45℃에서 80℃까지 1℃씩 상승시키며 형광을 측정하는 용해
곡선 분석을 수행하였다.
그 결과, 도 9~도 12에 나타난 바와 같이, 서열번호 4 내지 서열번호 7 중에서 선택되는 각각의 펩티드핵산을[0072]
세균 DNA 샘플(Streptococcus iniae, Streptococcus parauberis, Lactococcus garvieae, Edwardsiella tard
a)에 대하여 적용하게 되면 세균 별 증폭곡선 및 형광별 융해곡선 그래프를 얻을 수 있었다. 또한, 도 13에 나
타난 바와 같이, 1개 튜브에서 리얼타임 PCR을 동시에 수행함으로써 4개 융해곡선의 분석으로 4종의 세균
(Streptococcus iniae, Streptococcus parauberis, Lactococcus garvieae, Edwardsiella tarda)에 대한 다중
검출(multi-detection)이 가능하였다.
상기 결과를 종합하면, 세균의 개별적인 검출 또는 서로 다른 세균 종이 혼합되어 있는 시료로부터 세균 종의[0073]
판별이 가능하였다.
실시예 3: 융해형광 및 온도별 스코어에 따른 세균 종의 판별 및 검출 방법[0074]
본 발명에 따른 PNA 프로브를 이용하여 미지의 세균 유래 DNA 샘플에 대하여 세균 종을 판별 또는 검출하고자[0075]
하는 경우, 표 2와 같은 융해온도별 스코어 표를 미리 만들어 놓고, 이를 활용하는 것이 가능하다.
실시예 2에서와 같이 융해곡선 분석을 수행한 다음, 도출한 형광 신호 및 Tm값을, 상보성이 완전한 때의[0076]
(perfect match) 온도에 맞추어 디지털화하였다. 즉, perfect match 온도의 ±2℃ 범위를 만들고, 미지의 세균
DNA 샘플에 대한 Tm값이 상기 범위 안에 들면 종을 특정하여 판별할 수 있다.
표 2
형광 [0077] PM(℃) 세균의 종류
FAM 67 Edwardsiella tarda
HEX 63 Streptococcus parauberis
TexasRed 63 Streptococcus iniae
Cy5 63 Lactococcus garvieae
이상으로 본 발명 내용의 특정한 부분을 상세히 기술하였는바, 당업계의 통상의 지식을 가진 자에게 있어서, 이[0078]
러한 구체적 기술은 단지 바람직한 실시양태일 뿐이며, 이에 의해 본 발명의 범위가 제한되는 것이 아닌 점은
명백할 것이다. 따라서 본 발명의 실질적인 범위는 첨부된 청구항들과 그것들의 등가물에 의하여 정의된다고 할
것이다.
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도면
도면1
도면2
도면3
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도면4
도면5
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도면6
도면7
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도면8
도면9
도면10
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도면11
도면12
도면13
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서 열 목 록
<110> Republic of Korea(National Fisheries Research and Development Institute)
<120> Genetic Marker for Discrimination and Detection of Streptococcus Iniae, and Method for
Discrimination and Detection of Streptococcus Iniae Using the Same
<130> P16-B119
<160> 11
<170> KopatentIn 2.0
<210> 1
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220><223> Universal forward Primer(27F)
<400> 1
agagtttgat cctggctcag 20
<210> 2
<211> 18
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220><223> Reverse primer
<400> 2
gggttcatct gatggcat 18
<210> 3
<211> 18
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220><223> Universal reverse primer
<400> 3
tagccgtccc tttctggt 18
<210> 4
<211> 14
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220><223> PNA 1
<400> 4
등록특허 10-1677948
- 18 -
acgtcgcaag acca 14
<210> 5
<211> 14
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220><223> PNA 2
<400> 5
ctagagtaca catg 14
<210> 6
<211> 14
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220><223> PNA 3
<400> 6
aagactggtg cttg 14
<210> 7
<211> 14
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220><223> PNA 4
<400> 7
aatctgccga gtag 14
<210> 8
<211> 14
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220><223> Edwardsiella tarda_16S rDNA marker
<400> 8
tggtcttgcg acgt 14
<210> 9
<211> 14
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
등록특허 10-1677948
- 19 -
<220><223> Streptococcus iniae_16S rDNA marker
<400> 9
catgtgtact ctag 14
<210> 10
<211> 14
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220><
223> Streptococcus parauberis_16S rDNA marker
<400> 10
caagcaccag tctt 14
<210> 11
<211> 14
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220><223> Lactococcus garvieae_16S rDNA marker
<400> 11
ctactcggca gatt 14
등록특허 10-1677948
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